Männliche Unfruchtbarkeit - Diagnose

Die Diagnose der männlichen Unfruchtbarkeit umfasst eine Anamnese und Krankengeschichte, eine körperliche Untersuchung, eine detaillierte Untersuchung des Fortpflanzungssystems, wobei die Art der Unfruchtbarkeit (primär oder sekundär), ihre Dauer, vorherige Untersuchungen und Behandlungen beurteilt werden.

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Männliche Unfruchtbarkeit: Klinische Untersuchung

Die sexuellen und ejakulativen Funktionen werden wie folgt beurteilt. Die durchschnittliche Häufigkeit des vaginalen Geschlechtsverkehrs sollte mindestens zwei- bis dreimal pro Woche betragen. Eine Erektion gilt als ausreichend, wenn sie für vaginalen Geschlechtsverkehr ausreicht. Eine Ejakulation gilt als ausreichend, wenn sie intravaginal erfolgt. Anejakulation, vorzeitige Ejakulation (vor dem Eindringen) und extravaginale Ejakulation gelten als unzureichend.

Bei der Beurteilung des somatischen Status wird auf die aktuelle konstitutionelle und sexuelle Entwicklung, die Bestimmung des Körpertyps und das Verhältnis von Körpergewicht zu Körpergröße geachtet. Sekundäre Geschlechtsmerkmale und Gynäkomastie werden nach Stadien klassifiziert, Körpergewicht und Körpergröße werden anhand von Nomogrammen beurteilt.

Die Beurteilung des urogenitalen Status umfasst die Inspektion und Palpation der Hodensackorgane, um Position, Konsistenz und Größe der Hoden, Gliedmaßen und Samenleiter zu ermitteln. Dabei wird berücksichtigt, dass die normale Hodengröße 15 cm3 und mehr entspricht. Sie wird mit dem Prader-Orchidometer bestimmt.

Um den Zustand der akzessorischen Geschlechtsdrüsen zu bestimmen, wird eine digitale rektale Untersuchung der Prostata und der Samenbläschen durchgeführt.

Männliche Unfruchtbarkeit: Klinische Untersuchung

• Erstbefragung (Anamneseerhebung);
• allgemeine ärztliche Untersuchung;
• Untersuchung des Urogenitalsystems;
• Konsultationen mit einem Therapeuten, Genetiker, Sexologen (je nach Indikation);
• medizinische genetische Forschung.

Labordiagnostik der männlichen Unfruchtbarkeit

Die wichtigste Methode zur Beurteilung des Funktionszustandes der Geschlechtsdrüsen und der männlichen Fruchtbarkeit ist die Spermienanalyse.

Die relativ hohe Stabilität der Spermatogenese-Parameter bei jedem Individuum ermöglicht die Durchführung einer Spermienanalyse, vorausgesetzt, es liegt eine Normozoospermie vor. Im Falle einer Pathozoospermie sollte die Analyse zweimal im Abstand von 7–21 Tagen und bei 3–7 Tagen sexueller Abstinenz durchgeführt werden. Falls die Ergebnisse der beiden Untersuchungen stark voneinander abweichen, sollte eine dritte Analyse durchgeführt werden. Das Sperma wird durch Masturbation in einen sterilen Plastikbehälter gesammelt, der zuvor vom Hersteller auf Toxizität für Spermien getestet wurde, oder in ein spezielles Kondom. Die Verwendung von unterbrochenem Geschlechtsverkehr oder eines normalen Latexkondoms zur Gewinnung von Ejakulat ist nicht akzeptabel. Eine unvollständig gesammelte Probe wird nicht analysiert. Alle Manipulationen mit der Lagerung und dem Transport des Spermas werden bei einer Temperatur von nicht weniger als 20 °C und nicht mehr als 36 °C durchgeführt. Aus den beiden Spermiogrammen wird das beste Ergebnis ausgewählt. Es wird berücksichtigt, dass der höchste diskriminierende Indikator für die Spermienfruchtbarkeit die Spermienmotilität ist.

Zurzeit werden für die Spermienbewertung folgende WHO-Standardwerte akzeptiert.

Normale Spermienfruchtbarkeitsraten

Eigenschaften von Spermien
Konzentration	>20x10 6 /ml
Mobilität	>25 % Kategorie „a“ oder >50 % Kategorie „a“+„b“
Morphologie	>30 % Normalformen
Lebensfähigkeit	>50 % lebende Spermien
Agglutination	Abwesend
MAR-Test	<50 % bewegliche Spermien, die mit Antigenen beschichtet sind
Volumen	>2,0 ml
RN	7,2-7,8
Typ und Viskosität	Normal
Verflüssigung	< 60 Minuten
Leukozyten	<1,0 x 10 6 /ml
Flora	Fehlend oder <10 3 KBE/ml

Die Spermienmotilität wird in vier Kategorien bewertet:

• a - schnelle lineare fortschreitende Bewegung;
• in - langsame lineare und nichtlineare fortschreitende Bewegung;
• c – keine fortschreitende Bewegung oder Bewegung an Ort und Stelle;
• d - Spermien sind unbeweglich.

Begriffe, die bei der Auswertung der Spermienanalyse verwendet werden

Normozoospermie	Normale Spermienzahl
Oligozoospermie	Spermienkonzentration <20,0x10 6 /ml
Teratozoospermie	Normale Spermienformen <30 % mit normaler Anzahl und beweglichen Formen
Asthenozoospermie	Spermienmotilität <25 % Kategorie „a“ oder <50 % Kategorie „a“+„b“; mit normalen Indikatoren für Menge und morphologische Formen
Oligoasthenoteratozoospermie	Kombinationen von drei Varianten der Pathozoospermie
Azoospermie	Es gibt keine Spermien im Sperma
Aspermie	Keine Ejakulation

Bei fehlenden Spermien und vorhandenem Orgasmus wird nach Zentrifugation (15 Minuten bei 1000 Umdrehungen pro Minute) eine Untersuchung des postorgasmischen Urinsediments durchgeführt, um Spermien darin nachzuweisen. Ihr Vorhandensein deutet auf eine retrograde Ejakulation hin.

Die biochemische Untersuchung von Spermien dient der Untersuchung der physiologischen Eigenschaften der Samenflüssigkeit, was für die Beurteilung von Spermatogenesestörungen wichtig ist. Die Bestimmung von Zitronensäure, saurer Phosphatase, Zinkionen und Fruktose in Spermien hat praktische Bedeutung erlangt. Die sekretorische Funktion der Prostata wird anhand des Gehalts an Zitronensäure, saurer Phosphatase und Zink beurteilt. Zwischen diesen Parametern besteht ein klarer Zusammenhang, und nur zwei Indikatoren können bestimmt werden: Zitronensäure und Zink. Die Funktion der Samenbläschen wird anhand des Fruktosegehalts beurteilt. Diese Untersuchung ist besonders wichtig bei Azoospermie, wenn niedrige Fruktosewerte, ein niedriger pH-Wert und ein hoher Zitronensäuregehalt auf ein angeborenes Fehlen der Samenbläschen hinweisen. Im Ejakulat ermittelte Standardindikatoren:

• Zink (gesamt) – mehr als 2,4 mmol/l;
• Zitronensäure – mehr als 10,0 mmol/l;
• Fruktose – mehr als 13,0 mmol/l.

Zusätzlich zu den aufgeführten Untersuchungsparametern können weitere verfügbare Methoden einbezogen werden, beispielsweise die Bestimmung der ACE-Aktivität. Die testikuläre Isoform des Enzyms ist wenig erforscht. Gleichzeitig wurde festgestellt, dass die ACE-Aktivität im Ejakulat von Liquidatoren des Tschernobyl-Unfalls zehnmal höher war als die von Samenspendern und dreimal höher als die von Patienten mit chronischer Prostatitis.

In der Diagnostik von Funktionsstörungen des Fortpflanzungssystems unterschiedlicher Ätiologie werden entwickelte Methoden zur Bestimmung von Proteinen mit unterschiedlichen Funktionen eingesetzt. Im Ejakulat sind spezifische und unspezifische Proteine vorhanden: Transferrin, Haptoglobin, Lactoferrin, Fertilitätsmikroglobulin, Speichel-Sperma-Alpha-Globulin, Komplementkomponenten C3 und C4 und eine Reihe weiterer Proteine. Es wurde festgestellt, dass jede Störung der Spermatogenese oder Erkrankungen der Fortpflanzungsorgane zu einer Veränderung der Proteinkonzentration führen. Das Ausmaß der Schwankungen spiegelt die Merkmale eines bestimmten Stadiums des pathologischen Prozesses wider.

Um eine infektiöse Ätiologie auszuschließen, werden zytologische Analysen des Harnröhrenausflusses, des Prostata- und Samenblasensekrets sowie bakteriologische Analysen des Spermas und des Prostatasekrets durchgeführt. PCR-Diagnostik von Chlamydien, Mykoplasmen, Ureaplasmen, Cytomegalievirus und Herpes-simplex-Virus. Indirekte Anzeichen einer Infektion sind eine Veränderung des normalen Spermienvolumens, erhöhte Viskosität des Ejakulats, eingeschränkte Motilität und Agglomeration der Spermien sowie Abweichungen der biochemischen Parameter der Spermien und der Gonadensekretion.

Die Diagnostik der immunologischen Unfruchtbarkeit wird bei Patienten mit Pathozoospermie und dem Nachweis von Spermienagglutinaten oder Unfruchtbarkeit unklarer Genese durchgeführt, die keine Anzeichen einer reproduktiven Dysfunktion aufweist. Zu diesem Zweck wird eine Immundiagnostik mit dem Nachweis von Antispermien-Antikörpern der Klassen G, A und M in Spermien und Blutserum mittels Spermienagglutination und Spermienimmobilisierung durchgeführt. Diese Methoden weisen jedoch eine Reihe erheblicher Nachteile auf und sind sehr arbeitsintensiv.

Der MAR-Test (verdrängte Agglutinationsreaktion) ist derzeit die vielversprechendste Diagnosemethode, bei der mit menschlichem IgG beschichtete Latexkügelchen und monospezifisches Antiserum gegen das Fc-Fragment von menschlichem IgG verwendet werden.

Ein Tropfen (5 μl) der Latexsuspension aus Testprobe und Antiserum wird auf einen Objektträger aufgetragen. Der Latextropfen wird zunächst mit Spermien und anschließend mit Antiserum vermischt. Die Spermienzählung erfolgt unter einem Phasenkontrastmikroskop bei 400-facher Vergrößerung. Der Test gilt als positiv, wenn mindestens 50 % der beweglichen Spermien mit Latexkügelchen bedeckt sind.

AR. In 5–10 % der Fälle liegt die Ursache für Unfruchtbarkeit unbekannter Genese in einer Verletzung der spontanen und/oder induzierten AR. Im Normalfall führt die Bindung der Spermien an die Eizelle zur Freisetzung eines Enzymkomplexes aus dem Kopf des Spermiums, wobei Akrosin die Hauptrolle spielt und die Zerstörung der Eimembran und das Eindringen des Spermiums in diese gewährleistet. Folgende AR-Normalwerte werden akzeptiert: spontan (<20 konventionelle Einheiten), induziert (>30 konventionelle Einheiten), Induzierbarkeit (>20 und <30 konventionelle Einheiten).

Bewertung des Niveaus der Bildung freier Radikale im Ejakulat (FR-Test). Der FR-Test ist einer der wichtigsten Indikatoren zur Charakterisierung der Spermienfruchtbarkeit. Freie Radikale sind chemische Elemente, die ungepaarte Elektronen tragen, die mit anderen freien Radikalen und Molekülen interagieren und an Redoxreaktionen beteiligt sind. Eine übermäßige Bildung von FR kann zur Aktivierung der Lipidperoxidation der Plasmamembran von Spermien und zu Zellschäden führen. Die Quelle von FR im Genitaltrakt können Spermien und Samenflüssigkeit sein. Es ist bekannt, dass bei Männern mit Pathozoospermie und sogar Normozoospermie ein hoher Gehalt an freien Radikalen nachgewiesen werden kann. Indikationen für den FR-Test sind Unfruchtbarkeit vor dem Hintergrund von Normo- und Pathozoospermie, normale sexuelle Entwicklung ohne systemische und hormonelle Erkrankungen sowie Infektionen des Fortpflanzungssystems. Normale FR-Testwerte entsprechen <0,2 mV.

Die Bestimmung des Spiegels der Sexualhormone, die die Spermatogenese regulieren, ist ein wichtiger Faktor bei der Beurteilung der Fruchtbarkeit.

Sexualhormonspiegel bei gesunden Männern

Hormon	Konzentration
FSH	1-7 IE/l
LG	1-8 IE/l
Testosteron	10-40 nmol/l
Prolaktin	60-380 mIU/l
Estradiol	0-250 pmol/l

Die Spermatogenese wird durch das Hypothalamus-Hypophysen-System durch die Synthese von LHRH und Gonadotropinen reguliert, die wiederum die Bildung von Sexualhormonen über Rezeptoren von Zielzellen in den Gonaden regulieren. Die Produktion dieser Hormone erfolgt durch spezifische Zellen der Hoden: Leydig-Zellen und Sertoli-Zellen.

Die Funktion der Sertoli-Zellen besteht darin, eine normale Spermatogenese sicherzustellen. Sie synthetisieren androgenbindende Proteine, die Testosteron von den Hoden zum Nebenhoden transportieren. Leydig-Zellen produzieren den Großteil des Testosterons (bis zu 95 %) und einen geringen Anteil an Östrogenen. Die Produktion dieser Hormone wird durch LH rückgekoppelt gesteuert.

Die Spermatogenese umfasst eine Reihe von Stadien der Umwandlung primärer Keimzellen in Spermien. Unter den mitotisch aktiven Zellen (Spermatogonien) gibt es zwei Populationen, A und B. Subpopulation A durchläuft alle Stadien der Entwicklung und Differenzierung zu einem Spermium, während Subpopulation B in Reserve bleibt. Spermatogonien teilen sich in Spermatozyten erster Ordnung, die in die Meiose eintreten und Spermatozyten zweiter Ordnung mit einem haploiden Chromosomensatz bilden. Aus diesen Zellen reifen Spermatiden. In diesem Stadium bilden sich morphologische intrazelluläre Strukturen, die das Endergebnis der Differenzierung bilden – die Spermien. Diese Spermien sind jedoch nicht in der Lage, eine Eizelle zu befruchten. Sie erwerben diese Eigenschaft, wenn sie 14 Tage lang den Nebenhoden passieren. Es wurde festgestellt, dass Spermien, die aus dem Kopf des Nebenhodens gewonnen werden, nicht über die notwendige Beweglichkeit verfügen, um die Eihaut zu durchdringen. Spermien aus dem Nebenhodenschwanz sind reife Gameten mit ausreichender Beweglichkeit und Befruchtungsfähigkeit. Reife Spermien verfügen über eine Energiereserve, die es ihnen ermöglicht, sich mit einer Geschwindigkeit von 0,2–31 μm/s durch den weiblichen Genitaltrakt zu bewegen und so ihre Beweglichkeit im weiblichen Fortpflanzungssystem über mehrere Stunden bis Tage aufrechtzuerhalten.

Spermien reagieren empfindlich auf verschiedene Oxidationsmittel, da sie wenig Zytoplasma und damit eine geringe Konzentration an Antioxidantien enthalten.

Jede Schädigung der Spermienmembran geht mit einer Hemmung ihrer Beweglichkeit und einer Störung der Fruchtbarkeitseigenschaften einher.

Männliche Unfruchtbarkeit: Medizinisch-genetische Forschung

Zu den medizinisch-genetischen Tests gehört die Untersuchung des Karyotyps somatischer Zellen, wodurch die numerischen und strukturellen Anomalien mitotischer Chromosomen in peripheren Blutlymphozyten und Keimzellen im Ejakulat und/oder in der Hodenbiopsie bestimmt werden können. Der hohe Informationsgehalt der quantitativen narkologischen und zytologischen Analyse von Keimzellen deckt in der Regel Anomalien in allen Stadien der Spermatogenese auf, was weitgehend die Taktik im Umgang mit einem unfruchtbaren Paar bestimmt und das Risiko verringert, Kinder mit Erbkrankheiten zu bekommen. Bei unfruchtbaren Männern sind Chromosomenanomalien um ein Vielfaches häufiger als bei fruchtbaren Männern. Strukturelle Chromosomenanomalien stören den Verlauf der normalen Spermatogenese und führen in verschiedenen Stadien zu einer teilweisen Blockade der Spermatogenese. Es wird bemerkt, dass numerische Chromosomenanomalien bei Azoospermie vorherrschen und Oligozoospermie von strukturellen Anomalien begleitet wird.

Männliche Unfruchtbarkeit: Diagnose sexuell übertragbarer Infektionen

Derzeit wird die Rolle von Infektionen durch Erreger wie Chlamydien, Mykoplasmen, Ureaplasmen und eine Reihe von Viren – Cytomegalovirus, Herpes-simplex-Virus, Hepatitis und humanes Immundefizienzvirus – bei der Störung der Befruchtungsfähigkeit von Spermien breit diskutiert. Trotz zahlreicher Studien zum Vorkommen dieser Erreger im Genitaltrakt von Männern und Frauen gibt es widersprüchliche Schlussfolgerungen hinsichtlich ihrer Rolle bei der Entstehung von Unfruchtbarkeit. Dies erklärt sich vor allem dadurch, dass diese Infektionen sowohl bei fruchtbaren als auch bei unfruchtbaren Paaren auftreten.

Die Auswirkungen der immunologischen Folgen sexuell übertragbarer Krankheiten auf die Fruchtbarkeit sind ein eigenständiges Forschungsgebiet. Sekrete der akzessorischen Geschlechtsdrüsen enthalten antigene Substanzen, die die Bildung von Antikörpern stimulieren können. Antikörper werden entweder lokal in diesen Drüsen gebildet oder gelangen über das Blut in die Prostata oder in die Samenbläschen. Im Genitaltrakt können Antikörper die Beweglichkeit und Funktion der Spermien beeinflussen. Die meisten der derzeit bekannten Antigene sind spezifische Gewebesubstrate der Prostata und der Samenbläschen.

Labordiagnostik der männlichen Unfruchtbarkeit:

• Spermienanalyse (Spermogramm);
• Bestimmung von Antispermien-Antikörpern;
• Beurteilung der Akrosomreaktion (AR);
• Bestimmung des Ausmaßes der Bildung freier Radikale:
• zytologische Untersuchung des Sekrets der Prostata und der Samenbläschen;
• Tests auf Chlamydien, Ureaplasmose, Mykoplasmose, Cytomegalovirus, Herpes-simplex-Virus;
• bakteriologische Analyse von Spermien;
• Hormonuntersuchung (FSH, LH, Testosteron, Prolaktin, Estradiol, Schilddrüsen-stimulierendes Hormon, Trijodthyronin, Thyroxin, Antikörper gegen Thyreozytenperoxidase und Thyreoglobulin).

Instrumentelle Diagnostik der männlichen Unfruchtbarkeit

Zur instrumentellen Diagnostik gehören Thermografie und Echografie. Die thermografische Analyse der Hodensackorgane ermöglicht es, subklinische Stadien der Varikozele zu erkennen und die Wirksamkeit der chirurgischen Behandlung zu kontrollieren. Sie wird mit einer speziellen Thermografieplatte oder einer Wärmebildkamera durchgeführt. Bei Patienten mit Varikozele zeigt die Thermografie eine thermische Asymmetrie der rechten und linken Hodensackhälfte im Bereich von 0,5 °C bis 3,0 °C auf der Seite der Krampfadern. Mit dieser Methode lassen sich auch Temperaturverhältnisse bei Hydrozele, Leistenhernie und entzündlichen Erkrankungen der Hodensackorgane feststellen. Ultraschall wird durchgeführt, um den anatomischen und funktionellen Zustand der Prostata und der Samenbläschen zu beurteilen, vorzugsweise mit einem transrektalen Sensor. Es sollten Geräte mit dreidimensionaler Echografie (3D) verwendet werden. Dopplerometrie und Farbdoppler-Mapping können sowohl als eigenständige Methode als auch als zusätzliche Methode für eine genauere Diagnostik eingesetzt werden.

Eine Ultraschalluntersuchung der Schilddrüse und die Bestimmung ihrer Funktion (anhand des Gehalts der Hormone Trijodthyronin, Thyroxin und Schilddrüsen-stimulierendes Hormon im Blut) wird bei Patienten mit Verdacht auf eine knotige toxische Struma oder deren diffuse Vergrößerung sowie anderen Erkrankungen durchgeführt.

Röntgenuntersuchung. Um primäre Erkrankungen des Hypothalamus und/oder der Hypophyse bei Hyperprolaktinämie oder Hypothalamus-Hypophysen-Insuffizienz auszuschließen, werden Röntgenuntersuchungen durchgeführt: Schädelröntgen, MRT oder CT.

Die CT gewinnt in der Diagnostik krankhafter Veränderungen im Hypothalamus-Hypophysen-Bereich zunehmend an Bedeutung und entwickelt sich aufgrund ihrer klaren Vorteile gegenüber der konventionellen Radiographie zur Methode der Wahl bei der Untersuchung von Patienten.

Die Hodenbiopsie ist die letzte Methode. Sie wird bei idiopathischer Azoospermie durchgeführt, wenn ein normales Hodenvolumen und eine normale FSH-Konzentration im Blutplasma vorliegen. Es werden geschlossene (Punktion, transkutane) und offene Biopsien verwendet. Die offene Biopsie gilt aufgrund der größeren Materialmenge als aussagekräftiger und wird häufiger durchgeführt. Histologische Daten werden wie folgt klassifiziert:

• Normospermatogenese – das Vorhandensein eines vollständigen Satzes von Spermatogenesezellen in den Samenkanälchen;
• Hypospermatogenese - das Vorhandensein eines unvollständigen Satzes von Keimzellen in den Samenkanälchen;
• Aspermatogenese – das Fehlen von Keimzellen in den Samenkanälchen.

Es ist zu beachten, dass in einigen Fällen, um eine endgültige Entscheidung über die Wahl der Behandlungstaktik oder den Einsatz der Methode der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion zu treffen, auch bei unzureichenden Bluthormonkonzentrationen und Hypogonadismus eine Hodenbiopsie durchgeführt wird.

Instrumentelle Diagnostik der männlichen Unfruchtbarkeit:

• Ultraschall der Beckenorgane;
• Schilddrüsen-Ultraschall;
• Thermographie der Hodensackorgane (Fern- oder Kontaktthermographie);
• Röntgenmethoden (Schädeluntersuchung, Nierenphlebographie, CT);
• Hodenbiopsie.

Immunologische männliche Unfruchtbarkeit

Derzeit ist bekannt, dass die Häufigkeit immunologischer Unfruchtbarkeit in verschiedenen Populationen 5–10 % beträgt und immunologische Störungen des Prozesses der Spermienbefruchtung und der frühen Embryogenese mit dem Vorhandensein spezifischer Antikörper gegen Gameten, insbesondere gegen Spermien, verbunden sind.

Veränderungen der immunologischen Regulation im Körper durch Auto-, Iso- und Alloimmunisierung führen zur Bildung von Antikörpern gegen Spermien (Immunglobuline der Klassen G, A und M). Antikörper gegen Spermien können bei einem oder beiden Sexualpartnern, im Blutserum sowie in verschiedenen Sekreten des Fortpflanzungssystems (Zervixschleim, Ejakulat usw.) vorhanden sein. Man unterscheidet spermienimmobilisierende, spermagglutinierende und spermolysierende Antikörper. Das Auftreten von Antikörpern gegen Spermien bei Männern und Frauen kann verschiedene Ursachen haben. Im männlichen Fortpflanzungssystem treten Spermien erst auf, wenn sich eine Immuntoleranz gegenüber körpereigenem Gewebe entwickelt hat. Daher existiert in den Hoden eine hämatotestikuläre Barriere, die auf Höhe der Basalmembran des Tubulus convoluta und der Sertoli-Zellen gebildet wird und die Interaktion von Spermien mit immunkompetenten Zellen verhindert. Verschiedene Faktoren, die diese Barriere schädigen, führen zu Immunreaktionen. Dazu gehören entzündliche Erkrankungen der Hoden und der akzessorischen Geschlechtsdrüsen (Orchitis, Epididymitis, Prostatitis, Vesikulitis), Traumata und chirurgische Eingriffe (Herniotomie, Orchidopexie, Vasektomie), Durchblutungsstörungen der Geschlechtsorgane (Varikozele), hohe und niedrige Temperaturen der Hodensackorgane sowie anatomische Veränderungen (Verschluss des Samenleiters, Samenleiteragenesie, Leistenbruch). Es ist zu beachten, dass eine Schwangerschaft auch dann nicht ausgeschlossen werden kann, wenn ein oder beide Ehepartner Antikörper gegen Spermien haben.

Zur Immundiagnostik der männlichen Unfruchtbarkeit gibt es folgende Methoden:

Untersuchung der allgemeinen Immunität

• Labordiagnostische Methoden.
  • Bestimmung des Immunstatus.
  • Bestimmung von Antispermien-Antikörpern im Blutserum von Männern und Frauen

Untersuchung der lokalen Immunität

• Labordiagnostische Methoden.
  • Mikrosperoagglutination.
  • Makrospermaagglutination.
  • Spermienimmobilisierung.
  • Indirekte Fluoreszenz.
  • Durchflusszytometrie: Bestimmung von Antispermien-Antikörpern und Bestimmung der Akrosomreaktion.
• Biologische Methoden. Tests auf Verträglichkeit und Penetrationsfähigkeit von Spermien.
  • Shuvarsky-Guner-Test (Postkoitaltest). Bestimmt die Motilität der Spermien im untersuchten Zervixschleim.
  • Kremer-Test. Messung der Penetrationsfähigkeit von Spermien in Kapillarröhrchen.
  • Kurzrok-Miller-Test. Bewertet die Penetrationsfähigkeit von Spermien in den Zervixschleim.
  • Buvo- und Palmer-Test. Kreuzpenetrationstest mit Spendersamen und Zervixschleim.
  • MAR-Test.
  • Test der ventrikulären Penetration der Zona pellucida der Goldhamster-Eizelle durch Spermien. Es wird angenommen, dass die Fähigkeit von Spermien, an Membranen membranloser Hamster-Eizellen zu binden, durch die Akrosomreaktion und die Penetrationsfähigkeit charakterisiert wird.
  • Die Hamzona-Analyse ist eine der Methoden zur Beurteilung der Akrosomreaktion.
  • In-vitro-Fertilisation von Eizellen. Kreuzbefruchtungstests mit Spendersamen und reifen Eizellen.
• Untersuchung der Biochemie des Vaginalschleims in Abhängigkeit von der Phase des Menstruationszyklus (Bestimmung von pH-Wert, Glukosegehalt, verschiedenen Ionen usw.)